Mintaminőség az EBUS-TBNA tűkből és a molekuláris patológiai vizsgálatból

Új igények a tű kiválasztásával szemben a szövetmagok, sejtblokkok, NGS és PD{0}}L1 vizsgálatokhoz

https://profed.olympuschina.com/gs/thoracicsurgery/12628/

A precíziós onkológia korszakábanEBUS-TBNAnem csak azt kell válaszolnia, hogy „Rák?” de a következőket is biztosítják: szövettani altípus (adenokarcinóma/laphámsejtes karcinóma/nagysejtes/NSCLC-NOS), Ki-67, TTF-1/p40 festés, PD-L1 expresszió (22C3/SP142-klónok, ALKOS, és driver mutáció, A, stb.). BRAF, MET, RET, KRAS és széles NGS panelek). Ez eljárásonként jellemzően 10-250 ng DNS-hozamot igényel (platformfüggő), miközben megőrzi a szöveti architektúrát az IHC-képességhez, amely meghaladja a hagyományos FNA citológiai keneteket. Következésképpen az EBUS tűkialakítása a "szövetgyűjtés" (FNB/mag hozam) irányába fejlődik.

Mintatípusok és tűkapcsolatok:

• FNA (finom tű szívás):​Vissza-vágott egyetlen ferde A sejtblokkok lehetővé teszik az IHC és bizonyos molekuláris vizsgálatok elvégzését, de a korlátozott szövettérfogat kizárhatja a DNS megfelelőségét teljes exome vagy nagy NGS panelekhez.
• FNB (finom tűs biopszia):​Franseen hármas-él, korona-vágás vagy ProCore fordított-ferde tűk → szövetcsíkok/mikro-magok → rögzített, beágyazott szakaszok. Megőrzi a szöveti architektúrát, ami kiváló IHC-minőséget és magasabb DNS/RNS-hozamot tesz lehetővé az egyenértékű FNA sejtblokkokhoz képest.
• 19G nagy-Lumen tűk:A nagyobb belső átmérő kis szövetmagokat vagy nagyobb mintatérfogatot szív fel, alkalmas multiplex vizsgálatra, bár éberség szükséges a minta minőségét befolyásoló vérszennyeződés ellen.
• ROSE (gyors helyszíni kiértékelés{0}}) integráció:A helyszíni citopatológusok/technikusok előzetesen kiértékelik a kenetet, felmérve a „megfelelő sejtességet”, a nekrózist, a granulomákat vagy a limfoid szövetet, és meghozzák a mintavétel leállítását vagy az állomásváltást. A ROSE csökkenti az átlagos tűpasszokat (gyakran 3-4 vs. 6-7 ROSE nélkül), és javítja a minta megfelelőségi arányát. Egyes központok fáziskontraszt mikroszkópiát alkalmaznak a sejtblokk osztályozására.

A molekuláris teszteléssel vezérelt tűkiválasztás következményei:​Célzott és immunterápiás értékelésen áteső NSCLC-betegek esetében tanácsos előnyben részesíteni a 19G FNB vagy a 21G Franseen FNB tűket, ahol rendelkezésre állnak, biztosítva a mintavételt legalább 2-3 állomásról a sejtblokkok és a szövetmagok létrehozásához. A citológiai szűrés önmagában alkalmazhat 22G FNA tűket, de megnövekedett átadási számot és sejtblokk előkészítést igényel. A tanulmányok azt sugallják, hogy az NGS sikerességi aránya magasabb tendenciát mutat a 19G tűvel vett minták esetén, mint a 22G FNA-val, különösen a stromában gazdag vagy paucicelluláris daganatok esetében.

Mintakezelési javaslatok (gyakran a Használati utasításban - IFU):​ Azonnal öblítse át a tű lumenét a -szúrás után BSA/PBS pufferrel egy gyűjtőcsőbe → dolgozza fel a sejtblokkot (formalin rögzítés → paraffin beágyazódás), vagy rögzítse a szövetmagokat közvetlenül formalinban. A sejtdegeneráció elkerülése érdekében akadályozza meg a lumen kiszáradását. Kezelje az eltömődést a mandron finom előremozdításával vagy rövid levegőfúvással-, ezzel hangsúlyozva a mandron funkcionális célját (az eltömődés megakadályozása + a minta épségének megőrzése).

Összefoglalva, az EBUS-TBNA tűválasztás a „pusztán áthatoló” helyett a „tűtípus és az eljárási munkafolyamat molekuláris patológiai követelmények alapján történő testreszabására” irányul. Ez az evolúció az orvosi onkológusok, patológusok és intervenciós pulmonológusok multidiszciplináris együttműködésének fókuszpontját jelenti.